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大黄素

大黄素

临床概述

采用

大黄素的临床研究未鉴定出该评价。来自动物和实验研究的数据显示出强大的抗炎和抗氧化作用,可证明对癌症,骨质疏松症和心血管疾病,中枢神经系统,肝脏,代谢和呼吸道疾病有用。还注意到了抗菌和通便活性。没有临床数据支持任何这些用途。

加药

缺乏临床数据以提供剂量建议。

禁忌症

缺乏有关大黄素禁忌症的数据。与其他泻药一样,禁忌用于粪便压实,肠梗阻和无法诊断的腹痛患者。

怀孕/哺乳

蒽类代谢物可能会从母乳中排出。大黄素已被证明会损害小鼠胚泡中的胚胎发育,并且体外研究表明其对精子活力具有剂量依赖性抑制作用,但对精子活力没有影响。

互动互动

没有很好的记录。

不良反应

大黄素的浓度和时间依赖性毒性已在肝和肾细胞系中观察到。

毒理学

过量服用蒽醌泻药会导致肠道疼痛和严重腹泻,从而导致电解质失衡和脱水。对大黄素的致癌性进行了研究,结果尚不清楚。

资源

大黄素是一种多酚,存在于几种植物的根,叶和树皮中,包括芦荟(Aloe barbadensis),卡斯卡拉(Rhamnus pushiana),大黄(Rheum officinale),番泻叶(Cassia angustifolia),何首乌何首乌 Psychotria樟子松,大黄和大黄,大黄大黄,Stephania dinklagei和Ventilago madraspatana.Di 2015,Han 2015,Jia 2014,Lee 2011,Lin 2015,Nemmar 2015,Sharma 2017,Xue 2015

历史

大黄素由于其通便作用,已被用于肥胖相关疾病的中药治疗。最近,动物和实验研究支持大黄素在癌症中的应用Cha 2015,Di 2015,Jia 2014,Srinivas 2007以及与炎症和氧化过程失衡有关的疾病,包括心血管疾病,非酒精性脂肪肝,肝移植和骨质疏松症。 2012,Kim 2014,Lee 2012,Tong 2011,Yang 2014由于大黄素的生物利用度极低,因此临床应用受到限制。Di2015

化学

已经检查了各种提取方法中的睫毛膏。沸水可防止冷水提取过程中的损失和化合物的变化。大黄素衍生物的生产技术已经发表.Alaerts 2007,Bisset 1994,Coskun 1989,Duke 1985,Evans 1989,FDA 2002,Koyama 2008,Leung 1980,Lu 2006,Tan 2006,Wei 1992游离蒽醌的含量包括大黄素,在何首乌的加工过程中发生变化长时间加工后大黄素含量增加。在传统中药中,蒽醌已被用作确定何首乌质量的指标成分,基于大黄素和physcion的最低含量应为0.1%.Lin 2015

大黄素等羟基蒽醌是一种植物雌激素,对人的雌激素受体具有亲和力。杨(Yang)2014年大黄素的抗氧化和抗炎作用得到了实验和动物研究的支持,从而鉴定了肝保护和抗癌活性,以及​​对人的保护作用。心血管,神经,代谢,呼吸系统和骨骼疾病.Alisi 2012,Cha 2015,Chen 2009,Jia 2014,Kim 2014,Kitano 2007,Lee 2012,Lin 2015,Liu 2009,Liu 2014,Nemmar 2015,Srinivas 2007,Tang 2015 ,童2011,薛2015

大花青霉的活性成分大黄素emodin-8-O-β-D-吡喃葡萄糖苷对乙酰胆碱酯酶的抑制活性,以及​​通过抑制3-羟基-3-甲基戊二酰辅酶A(HMG-CoA)还原酶和二酰基甘油的降血脂作用大黄素已证明了酰基转移酶I.Lin 2015已被证明抑制蛋白酪氨酸激酶,导致许多对细胞功能重要的蛋白底物中酪氨酸的磷酸化降低。骆2015

用途和药理学

动物研究表明,大黄素口服给药后会经历广泛的葡萄糖醛酸苷化,导致生物利用度极低(小于3%)。然而,大黄素与胡椒碱的共同给药已被证明可改善大黄素的药代动力学,其曲线下面积(AUC)增加221%,最大浓度(C max )增加258%,清除率降低230% 2015年大鼠口服后,大黄素加工后的何首乌产品中大黄素和其他成分的生物利用度均低于原料。林2015年

抗纤维化作用

动物和体外数据

大黄素在肝损伤,胰腺炎,肾衰竭和肺纤维化的动物模型中表现出保护活性,陈2009,当2008,桂2007,李2009,王2007,王2007,王2007,王2007,张2005以及通过激活的纤溶活性。纤溶酶原激活物的体外检测.Radha 2008

抗炎/免疫系统作用

动物和实验数据

包括大鼠爪水肿和眼表炎症在内的炎症实验模型已被用于证明大黄素的作用机理,涉及大黄素对细胞因子和转录因子的影响。Chen2009,Kitano 2007,Liu 2009,Srinivas 2007动物研究大黄素对骨骼重塑的影响已证明对炎症和免疫信号介质核因子κB(NF-KB)具有抑制作用。Kim2014对脓毒症小鼠模型中炎症素激活和白介素1beta(IL-1beta)表达的调节这些过程的体外发现,位于NF-KB激活的下游。2015年1月,含有大黄素的何首乌水提取物通过减少IL-1β和肿瘤坏死因子-α的释放,有效保护了用四氯化碳处理的大鼠肝脏。 α(TNF-α)。在何首乌水提取物和阳性对照水飞蓟素之间,TNF-α水平没有差异。观察到水提取物是一种比单独的大黄素更强的TNF-α抑制剂,而大黄素和何首乌水提取物对IL)-1β的作用相似。Lee2012其他动物和实验研究也报道了类似的改善。血浆及各种组织中的TNF-alpha,IL-1beta和其他炎性细胞因子.Alisi 2012,Lin 2015,Nemmar 2015,Tong 2011,Xue 2015

抗菌活性

动物和体外数据

对细胞培养物的体外研究表明,大黄素具有抗菌活性(幽门螺杆菌,大肠杆菌,铜绿假单胞菌,蜡状芽胞杆菌和一些金黄色葡萄球菌菌株),杀病毒性(单纯疱疹)和抗真菌性(念珠菌)活性.Chen 2009,Hsiang 2008 ,Liu 2015,Srinivas 2007通过体外和体内研究证实了大黄素对耐甲氧西林的金黄色葡萄球菌(MRSA)的抗菌作用。大黄素具有与利奈唑胺相当的剂量依赖性作用,并且优于亚胺培南和头孢吡肟,其最小抑菌浓度(MIC)在2至8 mcg / mL之间,最小细菌浓度(MBC)在4至32 mcg / mL之间。大黄素在8和16 mcg / mL(分别是MBC的1倍和2倍)下,在16小时内证明MRSA的活力降低,与去甲万古霉素0.5 mcg / mL(MIC的1倍)相当。大黄素不易产生耐药性,因为经过20次传代抗性选择试验后MIC均未升高,而去甲万古霉素分别显示4和15传代后MIC分别提高了2倍和4倍。使用体内致死和亚致死小鼠模型证实了这些数据。大黄素在5和10 mg / kg时的存活率分别为50%和87.5%,而大黄素2.5 mg / kg和对照的大黄素分别为12.5%和0%。该机制似乎与细胞膜完整性的破坏有关,而与涉及细胞壁合成,裂解,药物积累或β-内酰胺酶活性的基因无关。此外,杀菌浓度未显示出细胞毒性.Liu 2015

据报道,从芦荟叶中提取的大黄素具有抗结核活性,MIC对结核分枝杆菌有6.25 mcg / mL的作用.Sharma 2017在体外,大黄素还被证明可以阻断严重急性呼吸综合征(SARS)冠状病毒刺突蛋白与血管紧张素的结合。转化酶2,表明其在治疗SARS中的潜在应用。Lin2015

抗氧化活性

动物和体外数据

在体外和体内研究中均已观察到抗氧化活性Alisi 2012,Lee 2012,Liu 2014,Nemmar 2015,Xue 2015分别使用大鼠肝细胞系和大鼠。以大黄素为主要抗氧化剂的大黄素和/或何首乌根的水提取物有效降低了四氯化碳诱导的(CCl 4 )细胞毒性。大黄素和水提取物可降低CCl 4诱导的AST和ALT水平升高;还观察到关键抗氧化剂酶的恢复,包括谷胱甘肽过氧化物酶,谷胱甘肽还原酶,谷胱甘肽S-转移酶和超氧化物歧化酶(SOD)。此外,大黄素和水提取物还可以减少脂质过氧化的其他生物标志物,例如丙二醛。在组织学和器官水平上也观察到了肝毒性的预防作用。Lee2012在非酒精性脂肪肝大鼠模型中也发生了类似的结果,该模型还证明了大黄素治疗组对氧化应激的未来反应有所改善,同时抗氧化疗法的活性增强大黄素和N-乙酰半胱氨酸。Alisi2012已在大鼠中风模型中证明了大黄素的适应原性作用,在该模型中,大鼠暴露于肺部柴油机排气颗粒(DEP)。与对照组相比,DEP暴露既引起抗氧化剂SOD降低( P <0.01),也引起抗氧化剂谷胱甘肽还原酶增加( P <0.001);大黄素显着逆转了这两个过程,表明具有提供自适应反应的能力。Nemmar2015

癌症

动物和体外数据

综述了大黄素在癌症治疗中的潜在应用。Srinivas2007。体外报道了许多人类癌细胞系的细胞周期抑制作用。Brown2007,Cai 2008,Cha 2005,Chen 2009,Fu 2007,Guo 2009,Huang 2009,金城2006,郭2009,戈德曼2006,卢2008,奥尔森2007,王2006,王2007,严2008,于2008然而,确切的作用机制尚不清楚。Srinivas 2007细胞凋亡以及抗肿瘤作用。已经证实,并且已经暗示了其作为化学疗法的辅助作用.Chen 2009,Guo 2009也已经揭示了抗血管生成作用.Kaneshiro 2006,Lu 2008不认为直接细胞毒性是导致细胞凋亡的原因,一些研究人员认为。信号通路的参与,激酶的抑制和微粒体酶的激活。Kaneshiro2006,Olsen 2007,Yan 2008最近的体外研究数据表明,大黄素具有抑制非小细胞肺癌(NSCLC)细胞生长的能力。与时间和时间有关的方式。机制涉及单磷酸腺苷激活的蛋白激酶(AMPK)的信号传导途径,随后抑制整合素连接的激酶,这两者在包括NSCLC在内的几种人类恶性肿瘤中都高度表达。此外,大黄素与也是AMPK抑制剂的二甲双胍的组合增强了大黄素的作用。唐2015很少进行动物实验(Guo 2009),尚未鉴定临床研究.Srinivas 2007

在乳腺癌小鼠模型中,腹膜内给予大黄素40 mg / kg / day持续18天可显着抑制肺转移,尽管对照组和治疗组在原发肿瘤的大小,重量和生长率上均无差异。基于减少的M2巨噬细胞在肺中的积累,提出了一种通过肿瘤相关巨噬细胞的新机制。这些数据突出了转录控制巨噬细胞激活和分化作为转移机制和潜在治疗靶标的作用.Jia 2014膀胱癌细胞系的体外研究进一步支持大黄素影响基因转录表达和逆转组蛋白的能力。 -诱导的与癌症进展,细胞存活和增殖相关的基因的表观遗传失调。大黄素逆转了致癌的表观遗传修饰,抑制了RNA聚合酶II的结合亲和力,并恢复了健康的细胞表观遗传过程。Cha 2015另一种机制可能是抗溶酶体活性。大黄素处理的HeLa宫颈癌细胞表现出溶酶体降解,包括自噬泡增加和组织蛋白酶渗漏,诱导凋亡.Trybus 2017

心脏和平滑肌的影响

动物和体外数据

在急性心肌梗塞和再灌注损伤的动物模型中,大黄素似乎通过不清楚的机制对心脏组织具有保护作用。Du 2005,Wu 2007对大黄素具有抗氧化和促氧化作用。Hei2006,Srinivas 2007, Wang 2007在平滑肌组织中,大黄素会影响钙和钾的外流机制。Wu2008,Wu 2009,Zheyu 2006

由于DEP是与各种心血管疾病(例如,心绞痛,心肌梗塞,心力衰竭)相关的微粒空气污染源,因此使用DEP动物模型来研究潜在的疗法和关键的潜在机制。这些机制涉及氧化应激,导致与动脉粥样硬化相关的促炎反应。在大鼠(包括中风模型)中的研究表明,由肺DEP暴露引起的炎症(IL-1-β,TNF-α),氧化(SOD)和血栓形成(血小板聚集,aPTT,PT)过程显着恶化大黄素4 mg / kg的服用可显着缓解。 DEP暴露同时具有促氧化作用和抗氧化作用,因此抗氧化剂SOD随暴露而显着降低( P <0.01),抗氧化剂谷胱甘肽还原酶显着增加( P <0.001)。大黄素显着逆转了这两个过程,表明具有提供适应性反应的能力。2015年内马尔(Nemmar)

CNS效应

动物和体外数据

体外和动物研究表明,大黄素对精神分裂症模型的受体信号传导机制起作用,并且还可以通过防止动物诱发的失忆症而具有5-羟色胺或毒蕈碱活性。Lu2007,Mizuno 2008在癫痫大鼠模型中,施用大黄素200 mg / kg腹膜内改善癫痫症状,并降低引起癫痫发作和多药耐药性的受体和酶的基因表达(P-糖蛋白和N-甲基-D-天冬氨酸[NMDA],环氧合酶-2和多药耐药性基因1)杨2015年大黄素刺激神经元分化和神经突生长的第一个证据在小鼠神经母细胞瘤细胞中得到证实。观察到神经突的生长活性是浓度和时间依赖性的,并且优于视黄酸诱导的活性,视黄酸是已知的神经元分化诱导剂。大黄素和视黄酸的组合观察到活性增强。机制与涉及磷脂酰肌醇3激酶,蛋白激酶B,糖原合酶激酶3-beta和cAMP反应元件结合蛋白的信号通路有关.Park 2015

此外,在大鼠模型中证实了神经保护作用免受外伤.Zeng 2017脑水肿减少,并且鉴定了多种促成机制,包括抑制水通道蛋白和金属蛋白9。

葡萄糖代谢

动物资料

对2008年至2010年发表的研究进行了有限的系统综述,确定了有关用于治疗2型糖尿病的营养补充剂的相关文献。在确定的那些动物中,有4个动物研究报告了大黄素的使用。施用大黄素可改善体重,血糖和/或胰岛素抵抗以及各种脂质参数。这些抗糖尿病作用部分归因于大黄素的过氧化物酶体增殖物激活受体(PPAR)-γ激动剂活性。由于大黄素具有预防泼尼松诱导的胰岛素抵抗的能力,但不能阻止地塞米松诱导的胰岛素抵抗,因此也证实了抑制11-β-羟类固醇脱氢酶的作用。Lee2011

保肝

动物资料

在非酒精性脂肪肝疾病(NAFLD)大鼠模型中,给大鼠饲喂高脂肪和高果糖饮食,以大黄素40 mg / kg / day施用15周可显着改善代谢参数(即甘油三酸酯,ALT,葡萄糖,胰岛素) (胰岛素抵抗)和肝脏重量(所有值P <0.01)与未接受大黄素的人比较。饲喂大黄素的NAFLD大鼠的值与饲喂标准饮食的对照组的值没有差异。对NAFLD动物肝脏的组织学分析表明,用大黄素处理的动物缺乏未经治疗的NAFLD大鼠肝脏中普遍存在的炎症细胞。此外,大黄素组的细胞脂肪变性和球囊扩张明显减少。与标准饮食相比,高脂/高果糖饮食诱导了炎症生物标志物TNF-α的增加,但没有引起IL-6的增加,而大黄素抑制了这种增加。在体外,大黄素还可以保护从NAFLD模型中提取的原代肝细胞免受氧化还原失衡的影响,从而进一步防止氧化应激。与其他抗氧化剂(例如N-乙酰半胱氨酸)并用显示出潜在的协同作用。这些数据反映了大黄素对NAFLD中发生的全身性炎症的潜在预防作用。Alisi2012在另一项使用肝移植大鼠模型和伴随组织分析的研究中,大黄素显着改善了中位生存时间(27.3天比10.5天; P < 0.001),通过显着限制炎症细胞浸润测量的急性移植物排斥反应降低,并导致排斥反应等级降低(从重度到中度),与未治疗的动物相比,排斥活性指数显着提高( P <0.01)。保护作用的机制似乎与T辅助(Th)细胞平衡从Th-1转变为Th-2(炎性细胞因子TNF-alpha和IL-2的下调以及IL-10的上调)有关血清和肝移植组织)。唐2011

氧化应激在酒精诱导的肝损伤中起关键作用,包括诱导细胞色素P450(CYP-450)2E1。在患有乙醇诱发的肝损伤的小鼠中,大黄素50 mg / kg / day阻止了在没有大黄素组的乙醇中观察到的肝酶,甘油三酸酯,胆固醇和脂肪变性的增加(每个P <0.01),并且产生的水平与对照组相当。其机理与大黄素的强抗氧化活性,抑制CYP2E1的表达,减少肝纤维化基因的表达以及增加肝脏中PPAR-γmRNA的表达有关,从而导致脂肪形成分化和减少。葡萄糖稳态。刘2014

泻药

动物和体外数据

炭疽菌苷能在小肠腔内主动分泌水和电解质,并抑制其从大肠吸收,引起肠内容物量增加和肠扩张压力增强,从而刺激蠕动。Cortex2002,Evans 1989,Leung 1980年大黄素苷引起通便作用,首先需要通过肠道菌群代谢为活性糖苷配基,并可能增加肠壁平滑肌的兴奋性。Srinivas 2007,Zhang 2005对小鼠和人肠上皮细胞的最新研究表明:大黄素增加了结肠细胞中水通道3水通道的产生和基因表达,这是介导水转移的主要通道。郑2014

血脂

动物资料

在动物模型中,大黄素的施用已证明具有降血脂作用(即,改善总胆固醇,甘油三酸酯和游离脂肪酸的含量)。可能的作用机制涉及对PPAR的激动作用.Dong 2005,Lee 2011,Zhao 2009

骨质疏松症/骨骼重塑

动物资料

老年人的骨质疏松症伴随着成骨细胞生成的减少,这是由于骨髓脂肪形成增加所致。动物研究表明,将大黄素添加到去卵巢的小鼠中可显着改善在没有大黄素的卵巢切除术中引起的负面骨骼结构影响。松质骨小梁恢复了接近正常的结构,小梁骨变宽。此外,由于骨骼和脂肪组织源自相同的祖细胞,因此评估了大黄素对骨髓脂肪细胞的作用。大黄素改善了卵巢切除术对骨髓脂肪组织和脂肪细胞的负面影响,大黄素产生的结果与对照组(假卵巢切除术)没有区别。大黄素的施用也上调了与细胞胶原基质形成相关的基因的表达,而与脂肪形成相关的基因的表达下调了。Yang2014除了通过刺激成骨细胞形成促进成骨细胞作用外,大黄素对破骨细胞形成的抑制作用已在小鼠中证明。大黄素的给药通过抑制凹坑的形成来抑制破骨细胞的早期细胞分化,但不能延迟晚期细胞分裂以及成熟破骨细胞的功能。大黄素还对小梁骨丢失提供保护作用。阐明了与基因表达抑制有关的信号传导和关键途径的信号传导减少的机制,这些关键途径在破骨细胞发育中起着重要作用(例如NF-KB配体介导的途径的受体激活剂).Kim 2014

呼吸系统疾病

动物资料

在小鼠中研究了大黄素对氧化应激的影响以及在吸烟后在肺组织中发生的细胞炎症和组织损伤。以20 mg / kg,特别是40 mg / kg的大黄素预处理可通过改善炎症细胞因子(即IL-1-beta,IL-6,TNF-α),抗氧化剂来预防香烟烟雾引起的肺部炎症。例如,SOD,过氧化氢酶,谷胱甘肽过氧化物酶,血红素加氧酶)以及诱导保护性抗氧化剂基因和酶表达的关键抗氧化剂核转录因子Nrf-2。薛2015年,大黄素显着改善了氧化应激的标志物(即脂质过氧化物酶) ,活性氧,减少的谷胱甘肽),炎性细胞因子(即TNF-α,IL-6,IL-1-beta)和肺部浸润(例如中性粒细胞,巨噬细胞)以及气道阻力( P <0.001) DEP诱发的气道超敏反应的小鼠模型.Nemmar 2015

加药

缺乏临床研究提供剂量建议。

怀孕/哺乳

在小鼠胚泡中,大黄素已显示出通过内在的细胞凋亡信号传导过程损害胚胎发育,导致25、50和75 mcM剂量的胚胎毒性.Lin 2015

在人类男性精子细胞中,体外研究表明,大黄素对精子活力具有剂量依赖性的抑制作用,但对精子的活力没有抑制作用。此外,大黄素还通过孕激素信号传导途径降低了精子穿透反映女性生殖道的粘性介质的能力。这些机制似乎与减少精子获能和顶体反应有关,这是由于精子头部细胞内钙水平降低以及运动所需的蛋白质酪氨酸磷酸化所致。

互动互动

含番泻叶和ca藜等含类蒽的植物可能会干扰其他药物的吸收.Cortex 2002,Fugh-Berman 2000

不良反应

在体外肝和肾细胞系中,大黄素的浓度和时间依赖性毒性已通过诱导细胞凋亡得到证实.Lin 2015

毒理学

在体外,通过胸苷激酶基因突变分析证明了大黄素在80和120 mcg / mL浓度下的致突变性.Lin 2015

过量服用蒽醌泻药会导致肠道疼痛和严重腹泻,从而导致电解质失衡和脱水。治疗应采用对症治疗,尤其要注意钾和其他电解质的水平,尤其是在老年患者和儿童中。Cortex2002

对大黄素的致癌性进行了模糊的研究。Srinivas2007大黄素具有抗氧化作用和促氧化活性,Cai 2008对大鼠神经胶质瘤细胞具有保护和毒性作用。Kuo2009尚未就大黄素的致突变性达成共识实现美国国家癌症研究所进行的为期2年的研究发现了对大鼠致癌性的模棱两可的证据.NTP 2001

参考文献

Alaerts G,Matthijs N,Smeyers-Verbeke J,Vander Heyden Y.草药提取物的色谱指纹图谱开发:整体柱上的筛选和优化方法。色谱学杂志2007; 1172(1):1-8.17942105
Alisi A,Pastore A,Ceccarelli S等。大黄素可防止饮食引起的大鼠肝脂肪变性期间肝内脂肪积累,炎症和氧化还原状态失衡。国际分子科学杂志2012; 13(2):2276-228922408453
Bisset NG,编辑草药和植物药物。斯图加特:Medpharm科学出版社; 1994年。
Brown M,Bellon M,Nicot C. Emodin和DHA通过产生活性氧并抑制Akt和AP-1,有效地增加了三氧化二砷干扰素诱导的HTLV-1转化细胞死亡。鲜血。 2007; 109(4):1653-1659。
蔡J,牛X,陈Y,等。大黄素诱导的活性氧生成抑制RhoA活化,使胃癌细胞对缺氧敏感。瘤形成。 2008; 10(1):41-51。
车德良,邱力,陈正涛,温Y,洪MC。大黄素下调雄激素受体并抑制前列腺癌细胞的生长。癌症研究。 2005; 65(6):2287-2295。
Cha TL,Chuang MJ,Tang SH,et al。大黄素调节表观遗传修饰并抑制膀胱癌细胞的生长。 Mol Carcinog 。 2015; 54(3):167-177。
Chen XH,Sun RS,Hu JM等。大黄素对博来霉素诱导的小鼠肺纤维化的抑制作用。临床药学生理学。 2009; 36(2):146-153.18785980
Chen J,Zhang L,Zhang Y,et al。大黄素靶向幽门螺杆菌的β-羟酰基-酰基载体蛋白脱水酶:具有晶体结构和热力学特征的酶抑制试验。 BMC微生物。 2009; 9:91.19433000
Chen RS,Jhan JY,Su YJ等。大黄素通过Rad51下调和ERK1 / 2失活增强吉非替尼诱导的细胞毒性。 Exp Cell水库。 2009; 315(15):2658-2672.19505457
皮质Rhanni Purshianae。载于:世界卫生组织精选药用植物专着。卷2.瑞士日内瓦:世界卫生组织; 2002年。
Coskun M.定量测定安纳托利亚南部和东部(土耳其)生长的鼠李属物种中的抗蒽环类化合物。 2.诠释J粗药物研究的一部分。 1989; 27(3):167-170。
Dang SS,Zhang X,Jia XL,et al。大黄素和黄芪多糖对大鼠慢性肝损伤的保护作用。中华医学杂志(英文) 。 2008; 121(11):1010-1014.18706249
Di X,Wang X,Di X,Liu Y.胡椒碱对大黄素在大鼠体内的生物利用度和药代动力学的影响。 J Pharm生物医学肛门。 2015; 115:144-149.26201645
董红,陆飞,高志强,徐丽娟,王开峰,邹旭。大黄素对高热量实验室食物诱导的鼠类非酒精性脂肪肝的治疗作用。世界胃肠病杂志。 2005; 11(9):1339-1344.15761972
杜Y(Ko KM)。大黄素处理对大鼠心脏线粒体ATP生成能力和抗氧化剂成分以及对缺血再灌注损伤的敏感性:单次剂量与多次剂量以及性别差异。生命科学2005; 77(22):2770-2782.15964600
JA公爵草药手册。佛罗里达州博卡拉顿:CRC出版社; 1985年。
埃文斯WC。 Trease和Evans的生药学。第13版。英国伦敦:Bailliere Tindall; 1989年。
某些其他非处方药II和III类有效成分的状态。美联储局长。 2002; 67(90):31125-31127。食品和药物管理局网站。 http://www.fda.gov/OHRMS/DOCKETS/98fr/050902a.pdf。 2009年12月28日访问。
傅中元,韩建新,黄慧云。大黄素对小细胞肺癌NCI-H446细胞基因表达谱的影响。中华医学杂志(英文) 。 2007; 120(19):1710-1715.17935676
Fugh-Berman A.药草相互作用[已发表的校正发表在Lancet上。 2000; 355(9208):1020]柳叶刀。 2000; 355(9198):134-138.10675182
桂敏,张玉芬,肖忠业,等。大黄素对大鼠肝星状细胞中金属蛋白酶-1(TIMP-1)表达的抑制作用。数字科学2007; 52(1):200-207.17160480
郭Q,陈Y,张B,康敏,谢Q,吴Y。大黄素在胰腺癌中增强吉西他滨的作用与生存素抑制有关。生化药理学。 2009; 77(11):1674-1683.19428321
Han JW,Shim DW,Shin WY等。大黄素通过减弱NLRP3炎性小体的活化而具有抗炎作用。国际分子科学杂志2015; 16(4):8102-8109.25867480
Hei ZQ,Huang HQ,Tan HM等。大黄素通过抗氧化和调节兔鞘磷脂途径抑制饮食诱导的动脉粥样硬化。中华医学杂志(英文) 。 2006; 119(10):868-870.16732991
乡CY,何TY。大黄素是一种新型的碱性核酸酶抑制剂,可抑制细胞培养物中1型单纯疱疹病毒的产生。 Br J药学。 2008; 155(2):227-235.18552872
大黄素,陈刚,史平。大黄素对人乳腺癌细胞基因表达谱的影响。癌症检测2009; 32(4):286-291.19185431
贾X,于峰,王健,等。大黄素抑制乳腺癌的肺转移,同时减少巨噬细胞募集和肺中M2极化。乳腺癌研究。 2014; 148(2):291-302.25311112
金城T,盛冈ka,稻amine M等。蒽醌大黄素通过抑制细胞外信号调节激酶1/2磷酸化来抑制肿瘤相关的血管生成。欧洲药典。 2006; 553(1-3):46-53.17056031
Kim JY,Cheon YH,Kwak SC等。大黄素通过抑制破骨细胞形成和刺激成骨细胞的形成来调节骨骼重塑。 J骨矿工研究。 2014; 29(7):1541-1553.25832436
Kitano A,Saika S,Yamanaka O等。大黄素抑制眼表炎症反应。投资眼科视科学。 2007; 48(11):5013-5022.17962452
Koyama J,Nisino Y,Morita I,Kobayashi N,Osakai T,Tokuda H.还原电位与蒽醌衍生物抑制爱泼斯坦-巴尔病毒活化之间的相关性。 Bioorg Med Chem Lett 。 2008; 18(14):4106-4109.18556196
Kuo TC,Yang JS,Lin MW等。大黄素对大鼠C6胶质瘤细胞具有细胞毒性和保护作用:Mdr1a和核因子kappaB在细胞存活中的作用。药理学疗法杂志。 2009; 330(3):736-744.19549930
李T,杜古亚JJ。营养补品及其对血糖控制的作用。 Curr Diab Rep 。 2011; 11(2):142-148.21298562
Lee BH,Yong YY,Duh PD,Wu SC。大黄素和何首乌对CCl(4)诱导的肝损伤的肝保护作用。药物生物学2012; 50(3):351-359.22103790
梁爱食品,药品和化妆品中常用的天然成分大全。纽约,纽约:威利(Wiley); 1980.39。
Lev-Goldman V, Mester B, Ben-Aroya N, Koch Y, Weiner L, Fridkin M. Synthesis and active oxygen generation by new emodin derivatives and their gonadotropin-releasing hormone conjugates. Bioconjug Chem . 2006;17(4):1008-1016.16848409
Li X, Liu W, Wang Q, et al. Emodin suppresses cell proliferation and fibronectin expression via p38MAPK pathway in rat mesangial cells cultured under high glucose. Mol Cell Endocrinol . 2009;307(1-2):157-162.19524136
Lin L, Ni B, Lin H, et al. Traditional usages, botany, phytochemistry, pharmacology and toxicology of Polygonum multiflorum Thunb.: a review.民族药理学杂志。 2015;159:158-183.25449462
Liu YX, Shen NY, Liu C, Lv Y. Immunosuppressive effects of emodin: an in vivo and in vitro study. Transplant Proc . 2009;41(5):1837-1839.19545739
Liu Y, Chen X, Qiu M, Chen W, Zeng Z, Chen Y. Emodin ameliorates ethanol-induced fatty liver injury in mice. Pharmacology . 2014;94(1-2):71-77.25228362
Liu M, Peng W, Qin R, et al. The direct anti-MRSA effect of emodin via damaging cell membrane. Appl Microbiol Biotechnol . 2015;99(18):7699-7709.25998658
Lu HM, Ni WD, Liang YZ, Man RL. Supercritical CO2 extraction of emodin and physcion from Polygonum cuspidatum and subsequent isolation by semipreparative chromatography. J Sep Sci . 2006;29(14):2136-2142.17069242
Lu MC, Hsieh MT, Wu CR, et al. Ameliorating effect of emodin, a constitute of Polygonatum multiflorum , on cycloheximide-induced impairment of memory consolidation in rats.民族药理学杂志。 2007;112(3):552-556.17572029
Lu Y, Zhang J, Qian J. The effect of emodin on VEGF receptors in human colon cancer cells [published correction appears in Cancer Biother Radiopharm . 2008;23(6):825-826]. Cancer Biother Radiopharm . 2008;23(2):222-228.18454691
Luo T, Li N, He YQ, et al. Emodin inhibits human sperm functions by reducing sperm [Ca(2+)]i and tyrosine phosphorylation. Reprod Toxicol . 2015;51:14-21.25463531
Mizuno M, Kawamura H, Takei N, Nawa H. The anthraquinone derivative emodin ameliorates neurobehavioral deficits of a rodent model for schizophrenia. J Neural Transm (Vienna) . 2008;115(3):521-530.18301953
Nemmar A, Al Dhaheri R, Alamiri J, et al. Diesel exhaust particles induce impairment of vascular and cardiac homeostasis in mice: ameliorative effect of emodin. Cell Physiol Biochem . 2015;36(4):1517-1526.26159184
Nemmar A, Al-Salam S, Yuvaraju P, Beegam S, Ali BH. Emodin mitigates diesel exhaust particles-induced increase in airway resistance, inflammation and oxidative stress in mice. Respir Physiol Neurobiol . 2015;215:51-57.26001677
National Toxicology Program. NTP toxicology and carcinogenesis studies of emodin (CAS NO. 518-82-1) feed studies in F344/N rats and B6C3F1 mice. Natl Toxicol Program Tech Rep Ser . 2001;493:1-278.12563347
Olsen BB, Bjørling-Poulsen M, Guerra B. Emodin negatively affects the phosphoinositide 3-kinase/AKT signalling pathway: a study on its mechanism of action. Int J Biochem Cell Biol . 2007;39(1):227-237.17018259
Park SJ, Jin ML, An HK, et al. Emodin induces neurite outgrowth through PI3K/Akt/GSK-3β-mediated signaling pathways in Neuro2a cells.神经科学莱特。 2015;588:101-107.25562207
Radha KS, Madhyastha HK, Nakajima Y, Omura S, Maruyama M. Emodin upregulates urokinase plasminogen activator, plasminogen activator inhibitor-1 and promotes wound healing in human fibroblasts.血管药理学。 2008;48(4-6):184-190.18328790
Sharma D, Yadav JP. An overview of phytotherapeutic approaches for the treatment of tuberculosis. Mini Rev Med Chem . 2017;17(2):167-183.27145855
Srinivas G, Babykutty S, Sathiadevan PP, Srinivas P. Molecular mechanism of emodin action: transition from laxative ingredient to an antitumor agent. Med Res Rev . 2007;27(5):591-608.17019678
Tan JH, Zhang QX, Huang ZS, et al. Synthesis, DNA binding and cytotoxicity of new pyrazole emodin derivatives. Eur J Med Chem . 2006;41(9):1041-1047.16716458
Tang Q, Zhao S, Wu J, et al. Inhibition of integrin-linked kinase expression by emodin through crosstalk of AMPKα and ERK1/2 signaling and reciprocal interplay of Sp1 and c-Jun. Cell Signal . 2015;27(7):1469-1477.25889897
Tong H, Chen K, Chen H, et al. Emodin prolongs recipient survival time after orthotopic liver transplantation in rats by polarizing the Th1/Th2 paradigm to Th2. Anat Rec (Hoboken) . 2011;294(3):445-452.21308995
Trybus W, Król T, Trybus E, Kopacz-Bednarska A, Król G, Karpowicz E. Changes in the lysosomal system of cervical cancer cells induced by emodin action. Anticancer Res. 2017;37(11):6087-6096.29061789
Wang L, Lin L, Ye B. Electrochemical studies of the interaction of the anticancer herbal drug emodin with DNA. J Pharm生物医学肛门。 2006;42(5):625-629.16828249
Wang R, Wan Q, Zhang Y, et al. Emodin suppresses interleukin-1beta induced mesangial cells proliferation and extracellular matrix production via inhibiting P38 MAPK.生命科学2007;80(26):2481-2488.17512021
Wang G, Sun B, Gao Y, Meng QH, Jiang HC. The effect of emodin-assisted early enteral nutrition on severe acute pancreatitis and secondary hepatic injury. Mediators Inflamm . 2007;2007:29638.18288270
Wang CH, Gao ZQ, Ye B, et al. Effect of emodin on pancreatic fibrosis in rats.世界胃肠病杂志。 2007;13(3):378-382.17230605
Wang XD, Gu LQ, Wu JY. Apoptosis-inducing activity of new pyrazole emodin derivatives in human hepatocellular carcinoma HepG2 cells. Biol Pharm Bull 。 2007;30(6):1113-1116.17541163
Wang X, Zou Y, Sun A, et al. Emodin induces growth arrest and death of human vascular smooth muscle cells through reactive oxygen species and p53.心血管药理杂志。 2007;49(5):253-260.17513942
Wei BL, Lin CN, Won SJ. Nakahalene and cytotoxic principles of Formosan Rhamnus species.纳特·普罗德(J Nat Prod) 。 1992;55(7):967-969.
Wu Y, Tu X, Lin G, et al. Emodin-mediated protection from acute myocardial infarction via inhibition of inflammation and apoptosis in local ischemic myocardium.生命科学2007;81(17-18):1332-1338.17939930
Wu ZX, Yu BP, Xia H, Xu L. Emodin increases Ca(2+) influx through L-type Ca(2+) channel in guinea pig gallbladder smooth muscle. Eur J Pharmacol . 2008;595(1-3):95-99.18713625
Wu ZX, Yu BP, Xu L, Xia H. Emodin inhibits voltage-dependent potassium current in guinea pig gallbladder smooth muscle. Basic Clin Pharmacol Toxicol . 2009;105(3):167-172.19486335
Xue WH, Shi XQ, Liang SH, Zhou L, Liu KF, Zhao J. Emodin attenuates cigarette smoke induced lung injury in a mouse model via suppression of reactive oxygen species production. J Biochem Mol Toxicol . 2015;29(11):526-532.26139382
Yan Y, Su X, Liang Y, et al. Emodin azide methyl anthraquinone derivative triggers mitochondrial-dependent cell apoptosis involving in caspase-8-mediated Bid cleavage. Mol Cancer Ther . 2008;7(6):1688-1697.18566240
Yang F, Yuan PW, Hao YQ, Lu ZM. Emodin enhances osteogenesis and inhibits adipogenesis. BMC补充Altern Med 。 2014;14:74.24565373
Yang T, Kong B, Kuang Y, et al. Emodin plays an interventional role in epileptic rats via multidrug resistance gene 1 (MDR1). Int J Clin Exp Pathol . 2015;8(3):3418-3425.26045880
Yu CX, Zhang XQ, Kang LD, et al. Emodin induces apoptosis in human prostate cancer cell LNCaP. Asian J Androl . 2008;10(4):625-634.18478162
Zeng JP, Jia LT, Jin X, Zheng JP, Zhang XW, Zhan RY. Emodin attenuates brain edema after traumatic brain injury in rats. Intl J Clin Exp Med . 2017;10(11):15213-15220.
Zhang XP, Li ZF, Liu XG, et al. Effects of emodin and baicalein on rats with severe acute pancreatitis.世界胃肠病杂志。 2005;11(14):2095-2100.15810074
Zhang HQ, Zhou CH, Wu YQ. Effect of emodin on small intestinal peristalsis of mice and relevant mechanism.世界胃肠病杂志。 2005;11(20):3147-3150.15918207
Zhao XY, Qiao GF, Li BX, et al. Hypoglycaemic and hypolipidaemic effects of emodin and its effect on L-type calcium channels in dyslipidaemic-diabetic rats.临床药学生理学。 2009;36(1):29-34.18785977
Zheng YF, Liu CF, Lai WF, et al. The laxative effect of emodin is attributable to increased aquaporin 3 expression in the colon of mice and HT-29 cells. Fitoterapia . 2014;96:25-32.24727085
Zheyu C, Qinghui QI, Lixin L, et al. Effects of emodin on Ca2+ signal transduction of smooth muscle cells in multiple organ dysfunction syndrome. J Surg Res . 2006;131(1):80-85.16271368

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